DOI: https://doi.org/10.22263/2312-4156.2022.4.59
Ю.И. Ярец1,2, И.А. Славников2,3
Использование качественных и количественных характеристик микробиоты острых ран для дифференцированного подхода к выбору тактики предоперационной подготовки к аутодермопластике
1Республиканский научно-практический центр радиационной медицины и экологии человека, г. Гомель, Республика Беларусь
2Гомельский государственный медицинский университет, г. Гомель, Республика Беларусь
3Гомельская городская клиническая больница №1, г. Гомель, Республика Беларусь
Вестник ВГМУ. – 2022. – Том 21, №4. – С. 59-69.
Резюме.
Цель – оценить возможность использования качественных и количественных показателей микробиологического исследования раневого отделяемого для определения дифференцированного подхода к выбору тактики подготовки острых ран к аутодермопластике (АДП).
Материал и методы. Проанализированы качественные и количественные показатели микробиологического исследования отделяемого острых ран 176 пациентов (срок до 21 суток), которое выполняли в динамике применения различных методов лечения.
Результаты. Отсутствие клинических признаков воспаления, отрицательный результат посева обосновывали возможность выполнения АДП у 23,8% пациентов (n=42) после проведения только консервативной подготовки. Присутствие в ранах E. faecalis, коагулазонегативных стафилококков определяет возможность использования механического дебридмента у 48,9% пациентов (n=86), результативность которого доказывалась успешным исходом АДП. Выделение из ран S. aureus, P. aeruginosa, A. baumannii, K. pneumoniae, P. mirabilis в количестве >105 КОЕ/мл является показанием к использованию ультразвукового и механического дебридмента. Комбинированный дебридмент чаще выполняли для ран сроком от 11 до 21 суток (42% vs 20,6% и 21,7% для ран сроком 5-10 суток и до 4-х суток, χ2=6,48; р=0,01). Лизис лоскута (5,1% пациентов, n=9) определял необходимость учета изолятов S. aureus, P. aeruginosa, A. baumannii, выделенных в количестве ≤105 КОЕ/мл.
Заключение. При определении процедуры подготовки острой раны к АДП необходимо учитывать не только клинические признаки воспаления, но и качественные и количественные характеристики микробиоты. Фено- и генотипические маркеры, отражающие патогенный потенциал изолятов, являются дополнительными критериями выбора метода дебридмента раны.
Ключевые слова: острая рана, микробиологический посев, интерпретация результатов, патогенный потенциал, дебридмент раны, аутодермопластика.
Источник финансирования: Исследование выполнено в рамках Гранта Президента Республики Беларусь в области здравоохранения (письмо Министерства здравоохранения Республики Беларусь от 20.01.2018, № 14-12/896) и в рамках задания НИР ГПНИ 4 на 2021–2025 гг. по теме «3.20 Изучение патогенного потенциала клинически значимых штаммов бактерий для повышения эффективности системы инфекционного контроля в стационаре».
Литература
1. Хирургические инфекции кожи и мягких тканей. Российские национальные рекомендации / ред. совет: Б. Р. Гельфанд [и др.]. 2-е перераб. и доп. изд. Москва, 2015. 109 с.
2. IWII: Wound infection in clinical practice [Electronic resource] / D. Angel [et al.]. Mode of access: https://www.woundsinternational.com/resources/details/iwii-wound-infection-clinical-practice. Date of access: 29.07.2022.
3. Kallstrom, G. Are Quantitative Bacterial Wound Cultures Useful? / G. Kallstrom // J. Clin. Microbiol. 2014 Aug. Vol. 52, N 8. Р. 2753–2756. doi: http://dx.doi.org/10.1128/JCM.00522-14
4. Клинический протокол диагностики и лечения пациентов с хирургической инфекцией кожи и мягких тканей в амбулаторных условиях : прил. к приказу М-ва здравоохранения Респ. Беларусь, 28 июня 2013 г., № 749 // Национальный фонд технических нормативных правовых актов Республики Беларусь [Электронный ресурс] / Гос. ком. по стандартизации Респ. Беларусь. Режим доступа: https://tnpa.by/#!/DocumentCard/420062/550762. Дата доступа: 29.07.2022.
5. Ультразвуковая кавитация в лечении нейроишемической формы синдрома диабетической стопы при наличии биопленочных форм бактерий (обзор литературы) / В. А. Митиш [и др.] // Раны и раневые инфекции. Журн. им. проф. Б. М. Костючёнка. 2020. Т. 7, № 3. С. 20–30. doi: http://dx.doi.org/10.25199/2408-9613-2020-7-3-20-31
6. Патофизиологические аспекты процесса заживления ран в норме и при синдроме диабетической стопы / Н. В. Максимова [и др.] // Вестн. РАМН. 2014. Т. 69, № 11/12. С. 110–117. doi: http://dx.doi.org/10.15690/vramn.v69i11-12.1192
7. Ярец, Ю. И. Методология микробиологического посева раневого отделяемого в рамках современных представлений о диагностике инфекционного процесса / Ю. И. Ярец, Н. И. Шевченко, В. Ф. Еремин // Лаборатор. служба. 2021. Т. 10, № 3. С. 33–42. doi: http://dx.doi.org/10.17116/labs20211003133
8. Dinesh, K. A study on ESKAPE pathogens the bad bug with no drug / K. Dinesh, M. Karthick // Tropical J. Pathol. Microbiol. 2018 Apr-Jun. Vol. 4, N 2. P. 134–138. doi: http://dx.doi.org/10.17511/jopm.2018.i02.02
9. Рожко, А. В. Метод микробиологической диагностики постравматической раневой инфекции : инструкция по применению № 211-1215 : утв. М-вом здравоохранения Респ. Беларусь 30.06.2016 г. / А. В. Рожко, Ю. И. Ярец, Н. И. Шевченко ; Респ. науч.-практ. центр радиацион. медицины и экологии человека. Гомель, 2015. 8 с.
10. Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам [Электронный ресурс] : клин. рекомендации : версия 2018-03. Режим доступа: https://www.antibiotic.ru/files/321/clrec-dsma2018.pdf. Дата доступа: 29.07.2022.
11. Таблицы пограничных значений для интерпретации значений МПК и диаметров зон подавления роста [Электронный ресурс] : версия 10.0, действует с 01.01.2020 / Европ. ком. по определению чувствительности к антимикроб. препаратам. Режим доступа: https://iacmac.ru/ru/docs/eucast/eucast-clinical-breakpoints-bacteria-10.0-rus.pdf. Дата доступа: 29.07.2022.
12. Presence of the ica operon in clinical isolates of Staphylococcus epidermidis and its role in biofilm production / V. Cafiso [et al.] // Clin. Microbiol. Infect. 2004 Dec. Vol. 10, N 12. P. 1081–1088. doi: http://dx.doi.org/10.1111/j.1469-0691.2004.01024.x
13. Characteristics of and Virulence Factors Associated with Biofilm Formation in Clinical Enterococcus faecalis Isolates in China / J. X. Zheng [et al.] // Front. Microbiol. 2017 Nov. Vol. 8. 2338. doi: http://dx.doi.org/10.3389/fmicb.2017.02338
14. Biofilm formation in enterococci: genotype-phenotype correlations and inhibition by vancomycin / A. Y. Hashem [et al.] // Sci. Rep. 2017 Jul. Vol. 7, N 1. 5733. doi: http://dx.doi.org/10.1038/s41598-017-05901-0
15. The correlation between the presence of quorum sensing, toxin-antitoxin system genes and MIC values with ability of biofilm formation in clinical isolates of Pseudomonas aeruginosa / S. Hemati [et al.] // Iran J. Microbiol. 2014 Jun. Vol. 6, N 3. P. 133–139.
16. Differences in biofilm mass, expression of biofilm-associated genes, and resistance to desiccation between epidemic and sporadic clones of carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii sequence type 191 / G. N. Selasi [et al.] // PLoS One. 2016 Sep. Vol. 11, N 9. e0162576. doi: http://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0162576
17. Nonrandom distribution of Pseudomonas aeruginosa and Staphylococcus aureus in chronic wounds / M. Fazli [et al.] // J. Clin. Microbiol. 2009 Dec. Vol. 47, N 12. P. 4084–4089. doi: http://dx.doi.org/10.1128/JCM.01395-09
Сведения об авторах:
Ю.И. Ярец – к.м.н., доцент, зав. клинико-диагностической лабораторией, Республиканский научно-практический центр радиационной медицины и экологии человека, ORCID: https://orcid.org/0000-0001-8879-5079
E-mail: Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра. – Ярец Юлия Игоревна;
И.А. Славников – к.м.н, доцент кафедры хирургических болезней №2, Гомельский государственный медицинский университет, ORCID: https://orcid.org/0000-0001-6431-4090
